RESUMO Este estudo avaliou os efeitos da exposição ao manganês (Mn2+), após 96 horas, a duas temperaturas (24 e 27°C) em juvenis de Centropomus parallelus por meio de análises bioquímicas (atividade das enzimas glutationa S-transferase (GST) e catalase (CAT)) e genotóxicas (teste do micronúcleo e ensaio cometa). A atividade da GST não mostrou diferença significativa entre os grupos expostos ao Mn2+ e os seus respectivos grupos controle, enquanto que um aumento significativo na atividade da CAT foi observado a 27°C no grupo exposto ao Mn2+, quando comparado ao grupo controle. As análises genotóxicas mostraram que os animais expostos ao Mn2+ tiveram aumento significativo na quantidade de células com micronúcleo em relação aos seus grupos de controles. Houve também aumento significativo na incidência de danos ao DNA nos grupos expostos a esse contaminante. Na temperatura de 24°C, os animais expostos ao Mn2+ tiveram maior quantidade de danos no DNA em relação a 27°C. É provável que o aumento da temperatura também possa induzir o estresse oxidativo. Assim, concluímos que o manganês é tóxico para os juvenis de robalo, causando dano genotóxico, e quando associado a um aumento da temperatura, também pode provocar um aumento no estresse oxidativo.

ABSTRACT This study evaluates the effects of exposure to manganese (Mn2+) for 96 hours at two different temperatures (24 and 27°C) on juveniles of Centropomus parallelus through the activities of glutathione S-transferase (GST) and catalase (CAT), micronuclei test (MN) and comet assay. The GST activity did not show any significant difference between the groups exposed to Mn2+ and the respective control groups; in contrast, a major increase in the CAT activity was observed at 27°C in the group exposed to Mn2+ compared to the control group. The genotoxic analyses showed that in all animals exposed to Mn2+, the number of red cells with micronuclei increased significantly compared to the respective control groups. There was also a significant increase in the incidence of DNA damage in the groups exposed to Mn2+. At a temperature of 24ºC, animals exposed to Mn2+ had more DNA damage than those at 27°C. It is likely that the increase in temperature can also induce oxidative stress. Thus, we conclude that manganese is toxic to the fat snook juveniles, causing genotoxic damage, and when associated with an increase in temperature, manganese can also provoke an increase in oxidative stress.

O óleo diesel pode ser uma fonte de contaminação em ambientes aquáticos, principalmente como resultado de derrames acidentais. Foram avaliados os efeitos da fração solúvel do óleo diesel (FSO) em Prochilodus vimboides. Os peixes foram expostos a três diferentes diluições da FSO por até 96 horas e comparados com um grupo controle. Os danos nos fragmentos de DNA foram analisados utilizando o ensaio Cometa. A presença de anormalidades nos eritrócitos foi avaliada pelo teste do micronúcleo. A atividade da Aspartato aminotransferase (AST) e alanina aminotransferase (ALT) e da acumulação de cobre nas brânquias também foram analisados. Os peixes expostos por 96 h tiveram maiores taxas de danos do que aqueles expostos por 24 h. Não houve diferença significativa quanto à presença de micronúcleos entre os peixes expostos e controle e entre 24 e 96 h exposições. Para AST, não foi observada diferença significativa entre as amostras coletadas em dois tempos de exposição. Os peixes expostos a uma diluição de 1:100 do FSO apresentaram maior atividade da enzima ALT do que os peixes do controle após um período de exposição de 24 horas. Não houve bioacumulação de cobre nas brânquias. Os efeitos genotóxicos nas células foram os mais evidentes em P. vimboides durante a exposição aguda a FSO.

Diesel oil can be a source of contamination in aquatic environments, mainly as a result of spills. The effects of the water-soluble fraction of diesel (WSF) on Prochilodus vimboideswere assessed. Fish were exposed to three different WSF dilutions for up to 96 h and were compared to a control group. Damages in the fragments of DNA were analyzed using the Comet assay. The presence of erytrocyts abnormalities was assessed by micronucleus test. Aspartate aminotransferase (AST) and alanine aminotransferase (ALT) activity and the accumulation of copper in gills were also analyzed. Fish exposed for 96 h had higher rates of damage than those exposed for 24 h. There was no significant difference regarding the presence of micronuclei between exposed and control fish and between 24-h and 96-h exposures. For AST, no significant difference was observed between samples collected at the two exposure times. Fish exposed to a 1:100 dilution of WSF showed higher activity of the enzyme ALT than the control fish after a 24-h exposure period. There was no bioaccumulation of copper in the gills. We conclude that the genotoxic effects of WSF in the cells are more evident in P. vimboides during an acute exposure.

Foram determinadas as temperaturas letais (TL50) inferiores e superiores de larvas de R. quelen. As larvas foram obtidas em dois períodos de desova com temperatura de incubação de 21 e 26ºC, respectivamente. Larvas foram colocadas em aquários onde a temperatura foi elevada em 1ºC, a cada 15min, ou reduzida 1º C, a cada 20min, até as larvas cessarem seus movimentos. Esta temperatura foi então fixada e mantida por 96h. O mínimo de mortalidade foi de 29 ± 1,5% obtido nas temperaturas de incubação. As TL50 inferiores foram 15,01 e 16,72ºC e as TL50 superiores foram 29,25 e 27,83ºC para as larvas incubadas a 21 e 26ºC, respectivamente. Portanto, aparentemente, não há diferença com relação à tolerância a variações de temperatura nas larvas incubadas nas duas temperaturas.

The lower and upper lethal temperatures (LT50) of R. quelen larvae were determined. The larvae were obtained from two spawning periods with hatching temperatures of 21 and 26ºC respectively. Larvae were placed in tanks at which the temperatures were either increased 1ºC every 15min, or reduced 1ºC every 20min until larval movement ceased. This temperature was then maintained for 96h. Minimum mortality (29.0 ± 1.5%) was observed in the larvae held at hatching temperatures. The lower LT50 were 15.01 and 16.72ºC, and the upper LT50 were 29.25 and 27.83ºC for the larvae hatching at 21 and 26ºC, respectively. Thus, apparently there is no difference with relation to temperature change tolerance between larvae hatched in both temperatures.